面对如此巨大的市场,药企们也在加速布局,临床进展不断提速。数据显示,全球在clinicaltrials.gov上注册的CAR-T临床项目已达700多项。纵观国内,累计有近40款CAR-T疗法正在研发中。随着越来越多的CAR-T产品即将步入临床,如何快速规模化地进行相对“个性化”的生产制备,并保证产品安全性和质量稳定性,是大家面临的一大挑战。
CAR-T细胞生产过程包括T细胞的富集和分离、CAR-T细胞的制备和终产品的低温贮藏。其中制备过程包括T细胞在体外的激活与扩增、CAR基因的转导、CAR-T细胞的扩增等步骤。本文简要概述CAR的基因转导与CAR-T细胞培养这两个关键环节。
1
关键环节一:CAR基因转导
在基因转导环节,CAR的结构设计、基因转导方式、转导效率等都是关键的影响因素。
自本世纪初,人们一直致力于修饰、改造CAR-T结构的胞内信号转导区,根据“共刺激分子序列”结构的不同,CAR-T 细胞可分以下五代:
第一代CAR-T仅有胞外结构域、跨膜结构域和胞内信号转导结构域组成,诱导T细胞激活仅通过CD3ζ信号域激活,缺少共刺激信号,细胞活性和效力很弱,需要外源性给予细胞因子;
第二代CAR-T中增加了一个4-1BB、或CD28、或OX40分子共刺激结构域,增强来自TCR-CD3的信号,细胞增殖能力和杀伤毒性都大大的增加,目前大多数产品使用的是二代CAR结构,如:诺华的Kymriah和吉利德的Yescarta;
第三代CAR-T增加了两个或更多共刺激结构域,以提高CAR-T的活性和效力。但是第三代的临床表现并不优于第二代CAR-T;
第四代CAR-T在二代的基础上可表达特定的细胞因子(IL-2、IL-12、IL-15等),克服了肿瘤免疫微环境的抑制,通过修饰肿瘤微环境募集并活化其他免疫细胞进行免疫反应,进一步增强对肿瘤的杀伤作用;
第五代通用型CAR-T敲除异体T细胞上的TCR(T细胞抗原受体)、MHC以及相关信号通路基因,以避免异体型CAR-T细胞的宿主排斥反应。
目前,主要有两种病毒载体用于CAR-T细胞基因转导:γ逆转录病毒载体和慢病毒载体。其中慢病毒载体在科研和临床开发中越来越受到青睐,主要因其具备以下优势:
慢病毒更安全,更低的致癌转化和随机转基因整合风险;
应用范围更广,可转导分裂/非分裂细胞;可以转导多种细胞,包括难以转导的造血前体细胞、神经元细胞、淋巴细胞和巨噬细胞等;
慢病毒转基因负荷量更大,可容纳6.5kb的外源基因且基因毒性更小;
慢病毒介导的基因表达持续且稳定,并随细胞基因组的分裂而分裂;
慢病毒生产成本较低;
慢病毒的转导效率接近100%,高于γ逆转录病毒。
作为递送基因的载体工具,高质量的慢病毒产品是CAR-T细胞药物有效性及安全性的保证,因此其慢病毒产品的质量表征是关键。临床试验中要求准确调整病毒载体剂量和细胞转导效率,并对最终产品进行严格的质量控制以保证其安全性。
目前慢病毒最精确滴度测量方法是,感染细胞后,使用qPCR来检测整合到靶细胞基因组中的前病毒拷贝数。这种方法可以区分多个整合事件,减少低估病毒滴度的可能性。此方法的主要缺点是工作量较大,需要用病毒制剂的连续稀释液转化靶细胞,分离基因组DNA,并使用针对病毒成分或转基因本身的引物来量化整合事件的数量。
表征细胞感染效率的关键参数是感染复数(MOI),即感染时病毒与细胞数量的比值。理论上MOI值越大,感染效率越高,但对细胞的毒性也越大,适宜的MOI值是高感染效率的关键因素之一。慢病毒的感染能力随细胞类型的不同而不同,因此每种不同的细胞类型需要不同的MOI。理想情况下,MOI与感染细胞数量之间应呈线性关系。
然而由于病毒结构的复杂性,慢病毒产品的质控也很重要。慢病毒GMP生产的一些特异性检测包括评估慢病毒载体的纯度与特性,如蛋白质和DNA污染物;形态和基因组完整性;安全性,如可复制型慢病毒、外源性病原体,支原体,内毒素/热原;病毒效力,如总/活性慢病毒颗粒;以及最终批次的其他理化性质,如pH、渗透压、电导率。慢病毒规模化生产的产能、成本、质量等各方面都将直接影响着CAR-T产品最终的治疗应用。
2
关键环节二:CAR-T细胞扩增培养
在 CAR-T 治疗过程中,需将经过技术改造的 T 细胞进行体外培养,达到符合治疗要求的细胞数量后,再回输到病人体内靶向杀死癌细胞。在CAR-T生产中,补充细胞因子以增强体外CAR-T细胞的增殖是一种常见的做法。IL-2可诱导T细胞扩增,通过调节IL-2浓度,可以增加早期记忆细胞数量。
另外,CAR-T细胞扩增还需要重点考虑如何保持CD4+和CD8+T细胞的平衡。而且,非转导的T细胞在有外源刺激因子刺激时也可以扩增。扩增时间受限于技术和培养体系的选择,通常需要1-2周。目前T细胞体外快速扩增仍然是一个挑战,即使有细胞因子的参与,扩增的速度和稳定性仍然需要进一步的探索和优化才能实现。
目前,绝大部分企业的CAR-T细胞制备仍旧是纯手动化生产,这样的生产方式不仅导致产品被污染的风险增加,而且容易产生产品批次间差异。另外,CAR-T的生产过程需由B级条件下的生物安全柜保障全过程的无菌性,因此对生产人员的无菌操作提出了极高的要求。CAR-T细胞产品一旦被细菌污染,现有技术都无法对其进行除菌,因此,监管部门对细胞治疗产品的GMP生产有着特别严格的环境清洁度和操作要求。环境监测必须严格验证,实时监测。而且,CAR-T细胞疗法是一种自体产品,不同患者的细胞之间应当避免交叉污染。
根据我国首个《CAR-T细胞制剂制备质量管理规范》,CAR-T细胞产品在生产时的每一个环节都应严格遵循临床要求。
总之,CAR-T细胞产品作为“活的”药品,与传统生物制品相比,其在生产工艺、质量研究、质量控制、放行检测和稳定性研究等方面均需要特殊考量,因此面临的挑战更大,需要更加全面和充分的分析方法来保证CAR-T细胞质量控制方法的稳定性和高效性。
2024-08-17
2024-09-02
2024-08-09
2024-08-19
2024-08-15
2024-08-28
2024-09-04
本文的目的是为了探讨注射用甲苯磺酸奥马环素的无菌方法开发及验证。通过采用薄膜过滤法,使用1mol·L-1硫酸镁溶液对样品及所用培养基进行处理,pH 7.0 氯化钠蛋白胨缓冲液(含 0.1% 组氨酸、0.3% 卵磷脂和 3% 吐温 80)进行冲洗,有效地消除了样品的抑菌性。得出的结论为采用 1 mol·L-1 硫酸镁溶液及 pH 7.0 氯化钠蛋白胨缓冲液(含 0.1% 组氨酸、0.3% 卵磷脂和 3% 吐温 80)可以有效地消除注射用甲苯磺酸奥马环素的抑菌性能,可以将该方法用于注射用甲苯磺酸奥马环素的无菌方法验证。
作者:印萍
评论
加载更多